实验准备:
饲养细胞:
融合前一天,取符合免疫质控标准的Balb/c小鼠,脱颈处死并泡在75%酒精中消毒。
用手术剪刀轻轻剪开老鼠的腹部皮肤。(注意请勿破坏小鼠的腹膜)
取10mL DMEM培养基在50mL无菌离心管中, 5mL注射器吸取3~5mL培养基,用手术镊子提起小鼠腹膜,将5ml培养基打入老鼠腹部,反复吹打3-4次后将培养基回收,置于50ml无菌离心管中。再次吸取5ml培养基,重复此步骤。
在无菌条件下取出小鼠脾脏,用研磨器研磨脾脏,与DMEM混合过筛网制成单个脾细胞悬液,再与腹腔细胞悬液混合,低速离心(1000rpm*10min),弃上清。
使用HAT培养基重悬,制成饲养细胞悬液,可按照105/孔使用,均匀铺96孔板,每孔100μL。(在制备过程中严格保证无菌)
SP2/0准备:
SP2/0细胞在融合前4—5天复苏,培养换液,使细胞在融合前状态良好且处于对数增长期。
试剂准备:
取1mL/管50% PEG1450一支,DMEM,FBS-DMEM,FBS-DMEM(HAT)等试剂,均预热置37℃
实验流程:
SP2/0收集:
SP2/0低速离心(1000rpm*5min),弃上清,用DMEM复悬清洗,再重复一次此步骤,37℃复悬备用。
脾细胞悬液制备:
取免疫完成的小鼠,眼球取血后,浸润在75%的酒精中消毒灭菌。在无菌条件下取出其脾脏,使用研磨器研磨脾脏,与DMEM混合过筛网制成单个脾细胞悬液,低速离心(1000rpm*10min),弃上清,用DMEM清洗并再一次重复此步骤,37℃复悬备用。
细胞融合:
将脾细胞和SP2/0按照[脾细胞:SP2/0 = 2:1~3:1]的比例,混合于50ml离心管中低速离心(1000rpm*10min),弃上清且确保管内无液体残留,将细胞团块轻轻敲散,使脾细胞 & SP2/0在管底均匀混合铺开。加入预热完成的50% PEG1450 ,在1min内逐滴均匀加入,加完后37℃反应1min,反应完成后加入10~15ml左右终止液(DMEM)终止反应,由慢至快逐步滴加,10min全部加入完成。
融合铺板:
细胞融合完成后,低速离心(1000rpm*10min),弃上清,使用FBS-DMEM(HAT)复悬细胞制成细胞悬液,(过程中注意动作轻柔,不可用力吹打,以免破坏融合细胞降低融合率)。将提前一天已加入饲养细胞的细胞培养板取出,用吸头将板内培养基上清全部吸出丢弃,将刚制备完成的细胞悬液加入96孔培养板中,每孔200μL,转入5% CO2恒温培养箱中培养观察。
融合换液:
融合细胞在FBS-DMEM(HAT)中培养3~7天,根据细胞融合情况,将培养上清吸出丢弃,更换成FBS-DMEM(HT),每孔200μL。换液后观察细胞形态,根据细胞生长情况,在4~7天后用Elisa进行融合阳性筛选检测。
*以上内容来自网络
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